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大豆过敏原ELISA检测试剂盒96 Tests

发表时间:2014-07-23

  大豆过敏原 ELISA 试剂盒 96 Tests- 上海甄准

大豆属于豆科。大豆中含 39 %蛋白。许多这蛋白质是已知的过敏原,例如 Gly M1 ,大豆球蛋白, Kunitz 胰蛋白酶抑制剂和 Gly m4 已知与桦树花粉 Bet v1 过敏原存在交叉反应性。因此,大豆是一个重要的食物过敏原。隐藏在食物中的大豆过敏原对芝麻过敏的人而言是一个关键问题。非常低量的大豆可引起过敏反应,严重会导致过敏性休克。大豆过敏的人必须严格避免大豆或含大豆的食物。在许多食物中未标记大豆作为添加剂。在生产过程中存在交叉污染。巧克力的生产过程是一个代表性的例子。在许多情况下,食物中残余的大豆不能被排除。因此,残留在食品中大豆敏感的检测系统是必需的。

只有少数的大豆蛋白在常规生产过程中(例如高温)是稳定的。因此,检测蛋白指示剂是有必要的。大豆胰蛋白酶抑制剂( STI )可以表示蛋白质。

检测样品:

上海甄准生物提供大豆 ELISA 试剂盒具有大豆胰蛋白酶抑制剂高敏感的检测系统,特别适用于定量检测饼干,麦片,雪糕,巧克力,速溶汤和香肠中残留的大豆。

产品特点:

灵敏度(大豆胰蛋白酶抑制剂): 16 ppb

回收率: 77-122%

培育时间: 60min

订购信息:

货号

中文品名

英文品名

规格

ZZKSOJ-E01

大豆过敏原 ELISA 试剂盒

Soja (Soy) Allergens ELISA Kit

96 Tests

检测原理

上海甄准生物提供的 大豆过敏原 ELISA 试剂盒 是酶联免疫检测方法 。检测胰蛋白酶抑制剂的抗 体包被在微孔板的表面。 大豆 含有样品或标准品加到微孔板的孔中。在室温下培养 20 分钟后,稀溶液洗涤将微孔板除去未结合的物质。将过氧化物酶偶联的第二抗体加入孔中,培育 20 分钟后,再次清洗微孔板。加入底物溶液并培育 20 分钟,直到变蓝色。加入终止液抑制显色反应,颜色变为黄色。在 450nm 处检测黄色吸光度。 芝麻 的浓度与测试样品的颜色强度直接成比例。


盒子包含试剂:

  试剂盒使用 96 次。储存在 2-8°C

1 12 *8 微孔板,包被抗胰蛋白酶抑制剂的抗体。

2 、胰蛋白酶抑制剂标准品 (0; 40; 100; 400; 1000 ppb) 5 vials  ,每瓶 1.0m ,红色,即用型。

3 、抗胰蛋白酶抑制剂过氧物酶共轭物: 15ml, 红色,即用型。

4 、底物溶液 (TMB) 15ml 即用型。

5 、终止液 (0.5 M H2SO4): 15 mL 即用型。

6 、样品提取和稀释缓冲液 (Tris): 2 x 120 mL 10x 浓缩液,红色。稀释 1+4 蒸馏水。稀释液保存在 4°C ,至少可保存 1 周。如果冷藏结晶过程中沉淀,浓缩物应加热至 37 15 分钟。

7 、洗涤液 (PBS + Tween 20): 60 mL 10x 浓缩液。稀释 1+9 蒸馏水。稀释液保存在 4°C ,至少可保存 1 周。如果冷藏结晶过程中沉淀,浓缩物应加热至 37 15 分钟。

8 、塑料袋储存未使用微孔板。

9 、操作手册。

示例标准值:

下表是示例的典型的标准曲线。计算值是 1000ppb 标准品的吸光度。这些值仅是示例。

STI  (ppb) 

% binding of  1000ppb

1000

100

400

76

100

36

40

19

0

7


性能参数:

1 、灵敏度

检测限  (LOD) 16ppb

最低定量限  (LOQ)  40ppb

由于样品基质多样性和空白影响,结果低于 LOD LOQ ,认为阴性的

2 、精确度

内部分析精确度    

6-8%

互分析精确度    

5-13 %

批间精确度

3-11%

3 、线性度

样品稀释线性度 81% - 114%

References

1. L`Hocine L, et al. (2007) – Allergenicity of soy-bean: new developments in identification of al-lergenic proteins, cross-reactivities and hypoal-lergenization technologies. Crit Rev Food Sci Nutr. 47(2):127-43

2. Rozenfeld P, et al. (2002) – Detection and iden-tification of a soy protein component that cross-reacts with caseins from cow´s milk. Clin Exp Immunol. 130:49-58

3. Brandon DL, et al. (2002) – Immunoassays of soy proteins. J Agric Food Chem. 50(22):6635-42

4. Koppelmann SJ, et al. (2004) – Detection of soy proteins in processed foods: literature overview and new experimental work. J AOAC Int. 87(6):1398-407

5. Brandon DL, et al. (1991) – ELISA analysis of soybean trypsin inhibitor in processed foods. Adv Exp Med Biol. 289:321-37

6. Moriyama T, et al. (2005) – A novel enzyme-link-ed immunosorbent assay for quantification of soybean beta-conglycinin, a major soybean sto-rage protein, in soybean and soybean food pro-ducts. J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo). 51(1):34-9

7. Band N, et al. (1998) – Quantitative analysis of Gly m Bd 28K in soybean products by a sand-wich enzyme-linked immunosorbent assay. J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo). 44(5):655-64

8. Castro F, et al. (2005) – Easy determination of the addition of soybean proteins to heat-proces-sed meat products (…). Food Addit Contam. 22(12):1209-18

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